Immune System


Fermentált búzacsíra-kivonat

(Avemar) antivirális hatásának

vizsgálata macska AIDS modellben

SUMMARY

Background:  To study the disease following human immunodeficiency virus

(HIV) infection, the feline AIDS model is suitable. Human and feline immunodeficiency viruses (FIV) show a high degree of similarity; cats harbour numerous

AIDS promoting homologous viruses, such as feline adenovirus (FeAdV). Antiviral

therapy can be supplemented with fermented wheat germ extract anticancer

medical food (Avemar granules), utilizing its antitumor and immunostimulant

effects.

Objectives:  To model acute and chronic immunodeficiency virus infection in

human and feline cell lines. To characterize the effect of Avemar on feline immunodeficiency virus strains, and feline adenovirus.

SUMMARY

Background: To study the disease following human immunodeficiency virus

(HIV) infection, the feline AIDS model is suitable. Human and feline immunodeficiency viruses (FIV) show a high degree of similarity; cats harbour numerous

AIDS promoting homologous viruses, such as feline adenovirus (FeAdV). Antiviral

therapy can be supplemented with fermented wheat germ extract anticancer

medical food (Avemar granules), utilizing its antitumor and immunostimulant

effects.

Objectives: To model acute and chronic immunodeficiency virus infection in

human and feline cell lines. To characterize the effect of Avemar on feline immunodeficiency virus strains, and feline adenovirus.

Fermentált búzacsíra-kivonat

SEJTVONALAK

Három macskaeredetű sejtvonal segítségével végeztük a kísérleteinket. Az MBM

egy IL-2-dependens T-sejt vonal (23), az FL-4 pedig IL-2 independens macska

T-lymphocyta sejtvonal, amely cytopathiás hatás (CP) nélkül folyamatosan termeli

a FIV Petaluma (FIV-Pet) törzsét (28). A CrFK macska-vesehámsejtvonal (ATCC®

CCL-94™). Ezeken kívül emberi méhnyakrák eredetű (HeLa) sejtvonalat (ATCC®

CCL-2™) használtunk. Az MBM- és a CrFK-sejtek a heveny, az FL-4-sejtek az idült

FIV-fertőzés modellezésére alkalmasak, a HeLa- és CrFK-sejtek pedig FeAdVfertőzésére és mennyiségi meghatározására, a CrFK-sejtek a FIV mennyiségi

meghatározására (titrálásra). 

SEJTKULTÚRÁK

A szuszpenziós MBM- és FL-4-sejteket 10% hőinaktivált borjúsavót (FBS),

1% penicillin-streptomycint, 1% L-glutamint és 25 mM Hepes puffert tartalmazó RPMI-1640 tápfolyadékban tenyészettük. A monolayer (egyrétegű) CrFKés HeLa-sejteket 10% hőinaktivált FBS-t, 4,5 g/L glükózt és L-glutamint, 1%

penicillin-streptomycint tartalmazó DMEM tápfolyadékban szaporítottuk

(BioWhittaker® Verviers, Belgium; Lonza ™ Walkersville, USA) 25 cm2-es sejttenyésztő edényben. 

VÍRUSOK

Az európai eredetű FIV-Pisa/M2 (22) és az amerikai eredetű FIV-Petaluma (28)

törzset, valamint a FeAdV magyarországi izolátumát (25) vizsgáltuk. A FIV-izolátumokat MBM-, CrFK- és FL-4-, a FeAdV-izolátumot pedig CrFK- és HeLa-sejteken

termeltük és titráltuk. Mind a szuszpenziós, mind a 90% konfluenciát mutató

monolayer sejteket fertőztük 1 fertőző egység vírusmennyiségű (multiplicity of

infection, MOI) FIV-, ill. FeAdV-vírussal. A jellegzetes CPH kialakulásakor a sejteket

centrifugáltuk (1000 g, 5 perc), majd a felülúszót és a vírust tartalmazó sejteket

külön-külön –80 °C-on tároltuk. 

FERMENTÁLT BÚZACSÍRA-KIVONATBÓL ELŐÁLLÍTOTT KÉSZÍTMÉNY (AVEMAR)

Az Avemar granulátum összetétele a következő (29): fermentált búzacsíra kivonat, maltodextrin, fruktóz, természetes narancsaroma, csomósodást gátló anyag

(kolloid SiO2), nátrium klorid.

Az Avemar granulátum készítményt fiziológiás sóoldatban vettük fel, majd

a fertőzetlen sejtekre kiterjedő esetleges toxikus hatását EZ4U sejt proliferációs és cytotoxikus fotometriás assay (Biomedica Medizinprodukte GmbH, Bécs)

segítségével vizsgáltuk. A különböző sejteket 4 × 104/lyuk koncentrációban 96

lyukú lemezeken tenyésztettük, majd 0 µg/ml, 250 µg/ml, 500 µg/ml, 1000 µg/

ml, 2000 µg/ml, 3000 µg/ml és 4000 µg/ml koncentrációjú Avemar-hígításokkal

kezeltük a sejteket, hogy a sejttenyésztő edény lyukaiban a végtérfogat 150 µl

legyen. Minden esetben három párhuzamos vizsgálatot végeztünk. Az egyszeri

Avemar-kezelés hatását 7 napon keresztül monitoroztuk, az 1., 2., 3. és 7. napon

mintát vettünk a sejtkultúrákból, és fotometriás assay segítségével vizsgáltuk a

sejtproliferációt a vizsgált Avemar-koncentrációk függvényében. A sejtek életképességét tripánkék festékkel ellenőriztük. Az Avemar antivirális tulajdonságainak

tanulmányozása érdekében a toxicitási eredményeket figyelembe véve hígítási

sorozatot készítettünk (10, 50, 100, 250, 500, 750, 1000 µg/ml), ezután kezeltük a

különböző fertőzött vagy fertőzetlen sejteket.

Az MBM-sejteket előkezeltük a különböző Avemar koncentrációkkal, majd

4 óra elteltével fertőztük a két különböző FIV-törzzsel. A fertőzést követő 11.

napon a felülúszókból mintát vettünk, de a vírushatást 17 napon keresztül monitoroztuk. FIV-Petaluma törzzsel CrFK-sejteket is fertőztünk; 4 órával

előbb, azonos időpontban, ill. 

section_15

Share by: